1.原理
GSH-PX在有GSH存在时,可清除过氧化物如过氧化脲,同时消耗GSH。DTNB时一种可被GSH还原的二硫化物,DTNB被GSH还原后,变成一种淡黄色的化合物,在412nm处有吸收峰,可通过测定DTNB被还原的量而估计GSH的消耗,以GSH的消耗量可推算GSH-PX的活性。
2. 测定意义
谷胱甘肽过氧化物酶(Glutathione peroxide,简称GSH-PX),是 一种含硒酶,几乎在动物的所有组织中都含有GSH-PX,尤其在肝和红细胞中的活性最高,GSH-PX的亚细胞分布主要是在细胞的包浆(75%)和线粒体基质(25%)中。
GSH-PX作为细胞内的一种抗氧化酶,和超氧化物歧化酶、过氧化氢酶一起,通过清除O2-和H2O2以减轻和阻断膜脂质的过氧化。在一些病理过程诸如辐射损伤、缺血、缺氧、中毒、炎症以及衰老,吞噬杀菌等生理过程中,GSH-PX都起着重要的作用。
3.测试所需仪器设备及自备试剂
可见光分光光度计,恒温水浴锅,离心机, 漩涡混匀器,精密移液器,试管。
4.适用范围
本试剂盒可测定动物血清、血浆、组织以及全血、血细胞中的GSH-PX的活力。
5.试剂及配置
试剂 | 50T | 100T |
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试剂1: | 25ml*1瓶,用于稀释试剂2以及配制标准品 | 50ml*1瓶, 用于稀释试剂2以及配制标准品 |
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试剂2 | 粉剂3.07mg*2支,试剂2用10ml试剂1溶解,得到1mmol/LGSH溶液,现配现用 | 粉剂3.07mg*4支,试剂2用10ml试剂1溶解,得到1mmol/LGSH溶液,现配现用 |
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试剂3 | 5ml*1瓶 | 10 ml *1瓶 |
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试剂4 | 100ml*1瓶 | 100ml*2瓶 |
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试剂5 | 7.5ml*1瓶,用时定容到75ml | 15ml*1瓶,用时定容到150ml |
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试剂6 | 5mg*1支,用试剂7稀释成为显色液 | 10mg*1支,用试剂7稀释成为显色液 |
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试剂7 | 50ml*1 | 100ml*1 |
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6.样本处理
(1)血清(浆):直接加样。
(2)组织匀浆液的制备:准确称取组织重量,按重量(g):体积(ml)=1:9的比例加入9倍体积的生理盐水,冰水浴条件下,制备成10%的组织匀浆,2500转/分离心10分钟,取上清,再用生理盐水稀释成最佳取样浓度。
(3)红细胞溶血液:大鼠麻醉以后,腹主动脉取血(以0.05%肝素抗凝),2000rpm离心10min,吸弃上清液,用3倍于原血量的冰冷生理盐水重复洗3次,弃上清液,加10倍体积的双蒸水溶血,然后再用PBS稀释10倍(1:99溶血液),置冰箱内备用。
7. 操作步骤
(1)酶促反应 |
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试剂 | 测定管 | 对照管 |
试剂2(ml) | 0.25 | 0.25 |
测定样品(ml) | 0.05 |
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试剂1(ml) | 0.1 | 0.15 |
37℃水浴预温5min
37℃水浴孵育5min
2000r/min离心10min,取上清液1ml作显色反应
(2)显色反应
| 空白管 | 标准管 | 测定管 | 对照管 |
20μmol/L GSH标准溶液 |
| 1 |
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标准品稀释液 | 1 |
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上清液 |
| 1 | 1 | 1 |
试剂5 | 1.25 | 1.25 | 1.25 | 1.25 |
显色液 | 0.25 | 0.25 | 0.25 | 0.25 |
混匀,,静置15min,在412nm波长下,双蒸水调零,测定吸光值

注意事项
(1)溶血液在室温下1小时内活力不变,建议样品稀释后不超过1小时检测为宜。
(2)血样要新鲜,肝素抗凝后放冰箱4-8℃存放不要超过48小时。
(3)测溶血液中的GPX含量要注意样品测试前红细胞一定要充分溶血。
(4)GSH应用液要现配现用。